Thèse soutenue

Identification et ciblage thérapeutique d'ARNs non-codants et leurs interacteurs protéiques

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Auteur / Autrice : Xavier Sabaté Cadenas
Direction : Alena Shkumatava
Type : Thèse de doctorat
Discipline(s) : Génétique
Date : Soutenance le 19/09/2022
Etablissement(s) : Université Paris sciences et lettres
Ecole(s) doctorale(s) : École doctorale Structure et Dynamique des Systèmes Vivants
Partenaire(s) de recherche : Laboratoire : Génétique et biologie du développement (Paris ; 2009-....)
établissement opérateur d'inscription : Institut Curie (Paris ; 1978-....)
Jury : Président / Présidente : Lionel Larue
Examinateurs / Examinatrices : Alena Shkumatava, Clément Carré, Ramesh Pillai, Reini Luco, Shahad Albadri
Rapporteurs / Rapporteuses : Clément Carré, Ramesh Pillai

Résumé

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L'importance des interactions ARN-protéines dans la biologie du cancer a été de plus en plus reconnue au cours des dernières années. Les protéines de liaison à l'ARN (RBP) régulent la maturation, la stabilité et la localisation subcellulaire des transcrits d'ARN, et sont également les moteurs de la fonction des ARN non codants impliqués dans de multiples processus biologiques. En outre, les interactions ARN-RBP sont apparues comme des régulateurs de l'oncogenèse et donc comme des cibles thérapeutiques potentielles.Le long ARN non codant (lncRNA) humain CASC15 a été signalé comme étant dérégulé dans le mélanome métastatique humain. Notre laboratoire a récemment identifié son orthologue chez le poisson zèbre, dont la séquence primaire est peu conservée au cours de l'évolution. À l'aide d'un modèle inductible de cancer de la peau chez le poisson zèbre, qui correspond étroitement au processus humain, nous avons démontré que CASC15 chez le poisson zèbre atténue l'initiation et la progression du mélanome. Ainsi, l'expression de CASC15 humain chez le poisson zèbre mutant pour ce lncRNA permet le sauvetage du phénotype de progression du mélanome. Nous supposons que chez les deux orthologues, les mêmes interactions ARN-RBPs expliquent leur conservation fonctionnelle. Dans mon premier projet, j'ai étudié le mécanisme d'action moléculaire de CASC15 dans une lignée cellulaire humaine. Comme pour le poisson zèbre, la délétion de CASC15 dans les cellules de mélanome humain accélère leur migration. De plus, en combinant différentes approches moléculaires et biochimiques, j'ai identifié un ensemble d'interacteurs protéiques commun chez les orthologues de CASC15 qui conduisent à leur conservation fonctionnelle. Ces résultats mettent en lumière la relation entre le mécanisme d'action et la compatibilité fonctionnelle entre les lncRNA de différentes espèces animales divergentes au niveau de leur séquence.En parallèle, j'ai également étudié YTHDF2, une RBP impliquée dans de multiples cancers humains. Cette protéine reconnaît une marque de méthylation présente dans des transcrits d'ARN spécifiques qui régule leur stabilité. La délétion de YTHDF2 empêche l’apparition et le développement de la leucémie aiguë myéloïde tout en préservant l'hématopoïèse normale in vivo. En raison de cette spécificité cancéreuse, YTHDF2 est apparu comme une cible thérapeutique unique. Cependant, l'identification de petites molécules qui ciblent les interactions ARN-RBPs dans les cellules est actuellement limitée par l'absence de méthodes de criblage non biaisées. Dans mon deuxième projet, j'ai adapté notre technologie d'interaction ARN-RBPs à une plateforme de criblage de médicaments. J'ai identifié plusieurs composés approuvés par la FDA qui inhibent spécifiquement la liaison de YTHDF2 à ses ARN cibles et j'ai établi la procédure pour contrôler la spécificité des résultats identifiés. Afin de trouver de nouvelles molécules, j'ai appliqué un crible computationnel basé sur les ligands identifiés ainsi que des fragments de ces derniers. L’ensemble de ce travail démontre que la protéine YTHDF2 peut être traitée par des médicaments et corrobore la fiabilité de notre méthode pour l'identification d'inhibiteurs ciblant des interactions ARN-RBPs spécifiques.En conclusion, j'ai établi des modèles in vivo, des systèmes cellulaires et des outils moléculaires robustes, menant à l'identification et au ciblage d'interactions fonctionnelles ARN-RBPs ayant des rôles cruciaux dans les cancers humains.